Microorganismos: Definición y Características
MO (Microorganismo): Toda entidad microbiológica, celular o no, capaz de reproducirse o transferir material genético.
- Capacidad de infección: Capacidad del material reutilizado para originar riesgo para el técnico u otros operarios en caso de manipular microorganismos patógenos.
- Virulencia de un MO: Grado de patogenicidad o gravedad de los daños que es capaz de causar.
- Agentes biológicos: Microorganismos susceptibles de originar cualquier tipo de infección, alergia o toxicidad.
Técnicas de Descontaminación, Desinfección y Esterilización
- Descontaminación: Aplicación de técnicas específicas que reducen drásticamente el número de microorganismos presentes o los eliminan por completo.
- Desinfección: Eliminación de los microorganismos capaces de infectar a un organismo vivo. Se realiza mediante:
- Desinfectantes: Se aplican sobre material inerte.
- Asépticos (Antisépticos): Se aplican para desinfectar manos, piel y mucosas.
- Esterilización: Eliminación de todos los microorganismos y sus esporas.
- Limpieza: Retirada de restos de sustancias del material.
Cabinas de Seguridad Biológica (CSB) y Niveles de Contención
CSB: Protección de muestras de cultivos frente a contaminación accidental. Su eficiencia se basa en el empleo de filtros HEPA (capaces de retener partículas pequeñas) y barreras o cortinas de aire (obligan al aire a fluir en una dirección determinada con un flujo bajo y constante).
Niveles y medidas de contención:
- Barreras de contención primaria: Evitan la dispersión del microorganismo (cabinas de seguridad).
- Barreras de contención secundaria: Protegen al trabajador de una posible infección (batas, guantes, gafas).
- Barreras de contención terciaria: Encaminadas a proteger a la colectividad (zonas estancas).
Clasificación de los Microorganismos
Según su relación con el oxígeno:
- Aerobios estrictos: Necesitan oxígeno para crecer y mueren en su ausencia.
- Anaerobios facultativos: Pueden crecer utilizando o no oxígeno. Si está presente, lo utilizarán y obtendrán energía de manera más eficiente.
- Anaerobios aerotolerantes: Crecen sin emplear oxígeno, pero su presencia no les daña.
- Anaerobios estrictos: Crecen sin emplear oxígeno y mueren si están expuestos a este de forma prolongada.
- Microaerófilos: Necesitan un ambiente con 2-10% de O2. Sufren daños en concentraciones normales.
Según su fuente de energía, carbono y electrones:
- Fuente de energía:
- Foto-: Luz.
- Quimio-: Compuestos químicos (inorgánicos u orgánicos).
- Fuente de carbono:
- Auto-: CO2.
- Hetero-: Degradación de moléculas orgánicas.
- Fuente de electrones (H y e–):
- Lito-: Sustancias inorgánicas.
- Organo-: Sustancias orgánicas.
Según la temperatura óptima de crecimiento:
- Psicrófilos: 0-20°C (óptima: 15°C).
- Psicrótrofos: 20-30°C.
- Mesófilos: 15-45°C (óptima: 20-45°C).
- Termófilos: 45-65°C (óptima: 55°C).
- Hipertermófilos: 55-90°C.
Según el pH óptimo de crecimiento:
- Acidófilos: pH 1-5.
- Neutrófilos: pH 5.5-8.5.
- Alcalófilos: pH 9-10.
Según la actividad de agua (aw):
- Osmófilos: Crecen a valores bajos de aw (hasta 0.6).
- Halófilos: Alta concentración de sal.
- Sacarófilos: Alta concentración de azúcar.
- Xerófilos: Medios secos.
Crecimiento Microbiano en Cultivo
Fases del crecimiento:
- Fase de latencia: Periodo inicial tras la transferencia de células a un nuevo medio de cultivo. No hay aumento significativo de la población. Los microorganismos necesitan adaptarse al nuevo entorno.
- Fase exponencial: Los microorganismos se multiplican a un ritmo constante. El número se duplica a intervalos regulares.
- Fase estacionaria: Los nutrientes disponibles se agotan, lo que reduce el crecimiento. La tasa de muerte se equilibra con la de división.
- Fase de muerte: Debido al agotamiento de reservas, las células empiezan a morir sostenidamente, provocando un descenso en la población.
Técnicas de Tinción
- Tinción simple:
- Preparación del frotis sobre un portaobjetos.
- Fijación del frotis.
- Aplicación de colorante.
- Uso de mordiente (opcional).
- Tinción negativa: Se utilizan colorantes aniónicos. La bacteria no se tiñe, pero el fondo sí (para observar la morfología externa y el tamaño).
- Tinción diferencial: Se utilizan dos colorantes para distinguir entre diferentes tipos de bacterias. Dos tipos principales:
- Gram positiva (Gram+): Pared gruesa, se tiñe de violeta.
- Gram negativa (Gram-): Pared delgada, se tiñe de rosa.
Procedimiento de la tinción de Gram:
- Aplicación de colorante primario (cristal violeta).
- Adición de lugol como mordiente para fijar el colorante.
- Decoloración con alcohol-acetona para eliminar el exceso de colorante.
- Aplicación de colorante de contraste (safranina).
Mejora del Contraste en Microscopía Óptica
Factores que influyen en la calidad de la imagen:
- Enfoque.
- Aumentos.
- Resolución.
- Contraste: Se puede mejorar ajustando la intensidad de la luz, moviendo el condensador o utilizando el diafragma.
Parámetros de Incubación y Vías Metabólicas
- Parámetros de incubación: Temperatura, tiempo, luz, humedad relativa (%), concentración de O2.
- Vía oxidativa: El aceptor final de electrones es el oxígeno.
- Vía fermentativa: El aceptor final de electrones es un compuesto orgánico y el proceso es anaerobio.
Denominación de Microorganismos (Ejemplos)
- Microorganismo que presenta un crecimiento óptimo a 15°C y pH = 9.0: Psicrófilo alcalófilo
- Microorganismo eucariota unicelular que se reproduce por gemación: Levadura
- Microorganismo unicelular sin núcleo diferenciado: Procariota
- Hongo septado con estructura micelar: Moho
- Bacteria en forma de bastón que se tiñe de rojo en la tinción de Gram: Bacilo Gram negativo
- Tipos de células con pared celular: Células vegetales, hongos, algas y la mayoría de las procariotas
- Tipos de reproducción posibles en los hongos: Reproducción sexual y/o asexual
- Posibles ciclos de vida de un virus: Ciclo lítico y ciclo lisogénico
- Microorganismos que se desarrollan a valores de actividad de agua (aw) bajos:Osmófilos
- Virus (m.o. constituido solo por ADN o ARN): *Virus* (no se considera un organismo vivo en sentido estricto)
Agar Eosina Azul de Metileno (EMB)
El Agar Eosina Azul de Metileno (EMB) se emplea como medio diferencial para el aislamiento y diferenciación de bacterias entéricas Gram negativas. Contiene una mezcla de azul de metileno y eosina que inhibe el crecimiento de bacterias Gram positivas y permite diferenciar entre las bacterias capaces de fermentar lactosa y las que no. El medio EMB de Levine es una variante que se incuba en jarras de anaerobios (aunque no es estrictamente anaerobio, la reducción de oxígeno favorece la diferenciación).