Obtención de una Buena Muestra para Identificar un Agente Infeccioso

Introducción

La obtención de una muestra adecuada es fundamental para el diagnóstico preciso de una infección. Una muestra bien tomada permite la identificación del agente infeccioso y la elección del tratamiento más efectivo.

Pasos Clave para la Obtención de Muestras

1. Selección del Lugar Anatómico Adecuado: Elegir el sitio donde el agente infeccioso se encuentra en mayor concentración y puede ser recuperado, cultivado u observado.
2. Evitar la Contaminación de la Microbiota Indígena: Realizar una esterilización adecuada de la piel antes de tomar hemocultivos, por ejemplo.
3. Evitar el Contacto con Antisepticos, Desinfectantes o Antibióticos: Las muestras deben tomarse antes de iniciar cualquier tratamiento antimicrobiano. En el caso de heridas infectadas, limpiar con agua o solución salina antes de la toma.
4. Recogida de Suficiente Cantidad de Muestra: Por ejemplo, varias tomas de 10 ml en el caso de hemocultivos en adultos.
5. Utilización de Contenedores Estériles Adecuados: Tubos de boca ancha y cierre hermético para la recogida de orina, por ejemplo.
6. Uso de Sistemas con Medios de Transporte: Cuando sea necesario.
7. Identificación Correcta de la Muestra: En el contenedor, con los datos de identificación y localización del paciente.
8. Cumplimentación del Formulario de Petición: Indicando el día y hora de la toma, detalles del proceso clínico y los antibióticos que está recibiendo el paciente.
9. Transporte Rápido al Laboratorio: Especialmente para muestras que requieren un diagnóstico urgente o cuya calidad puede disminuir con el tiempo.
10. Conservación en Condiciones de Temperatura Adecuadas: Según el tipo de microorganismo y muestra durante el transporte y la conservación.

Toma de Muestras

Material

• Botes de Plástico Estériles: Para orina, heces y esputo. Se utilizan bolsas pediátricas para orina en niños.
• Jeringas Estériles: Para la recogida de productos como pus.
• Tubos Estériles: Para introducir los productos obtenidos por punción.
• Escobillón: Mango con una torunda de algodón en el extremo.
• Portaobjetos de Vidrio: Para la observación in situ de la muestra.
• Otros Materiales: Pipeta Pasteur para muestras abundantes.

Técnica

A. Orina

Se recomienda la primera orina de la mañana. Si no es posible, debe haber transcurrido al menos 2-3 horas desde la última micción. La orina se deposita en un frasco de plástico estéril, teniendo en cuenta las siguientes precauciones:

• Lavado cuidadoso de los genitales externos en ambos sexos.
• Micción con el glande descubierto (hombres) y los labios mayores y menores separados (mujeres).
• Desechar el primer tramo de micción (40-50 ml).

La muestra se procesará tras la toma.

B. Lesiones Genitales

• Uretritis Masculina: Se toman dos muestras: una uretral y otra de orina mediante la técnica de micción fraccionada.
• Vulvovaginitis y Cervicitis: Se realizan varias tomas vaginales.
• Lesiones Genitales Ulceradas: Se descama la superficie de la lesión con la punta de una pipeta Pasteur estéril e se irriga con suero fisiológico estéril.

C. Heces

Se puede realizar de dos formas:

• Defecación Voluntaria: Se realiza sobre un recipiente limpio y se toma una pequeña cantidad de materia fecal con una espátula estéril, depositándola en un bote estéril.
• Escobillonado: Se introduce el escobillón en el recto a través del ano y se rota ligeramente. Se aplica también en el caso de heces líquidas.

D. Sangre

Existen varias formas:

• Procedimiento Clásico: Utilizando jeringa y aguja estériles.
• Sistema de Hemocultivo: Tubos o frascos preparados comercialmente que llevan el medio de cultivo incorporado.
• Procedimiento Mixto: Extraer la muestra por el procedimiento clásico e introducirla en un sistema de hemocultivo.

E. Secreciones Rinofaríngeas

• Se realiza con escobillón a nivel de la lesión, más frecuente sobre las amígdalas.
• Si la toma se realiza a nivel de las fosas nasales, se introduce el escobillón rotándolo ligeramente.

F. Esputos

Se recoge en un tubo estéril de plástico tras la expectoración profunda, preferentemente matinal y en ayunas, tras haber enjuagado la boca con agua.

Recogida y Transporte

Las muestras se analizarán inmediatamente siempre que sea posible. Si no es posible, se deben conservar en condiciones que reduzcan al mínimo la alteración de los posibles microorganismos existentes. En ocasiones, la muestra debe ser transportada para procesarse en un lugar diferente de donde se realizó la toma. Las normas básicas son:

• Procesar la muestra tan pronto como sea posible.
• Evitar cambios bruscos de condiciones ambientales.
• Emplear material resistente y, si el trayecto es largo, embalarlas para evitar golpes.
• Etiquetar perfectamente la muestra, sobre todo las que presentan elevado riesgo infeccioso.

Métodos Anaerobios

La finalidad es evitar el contacto de la muestra con el oxígeno, impedir la desecación y evitar la multiplicación de los microorganismos. Existen diversos métodos:

• Jeringa montada, tubos con atmósfera anaerobia, hisopos para anaerobios y bolsas anaerobias.

Identificación

El objetivo es la identificación del agente causal del proceso para poder poner una terapia adecuada.

• Identificación Morfológico-Tintorial: Efectuada a través del examen directo del microorganismo y su cultivo.
• Identificación y Tipificación Bioquímica: Utilizada para bacterias y levaduras.
• Identificación Inmunológica: Determina la presencia de antígenos de los microorganismos o de anticuerpos elaborados contra ellos.

Comunicación de Resultados

Después de todo análisis, se debe emitir un informe escrito comunicando los resultados. Existen dos tipos:

• Informe Preliminar: Los primeros resultados. Se emite cuando se quiere instaurar de modo urgente un régimen terapéutico.
• Informe Final: Se realiza tras finalizar todas las pruebas, debiendo ser lo más completo posible.

El informe debe ser claro, breve y lo más orientativo posible, evitando ser demasiado extenso.