Obtención de una Buena Muestra para Identificar un Agente Infeccioso

Para obtener una muestra adecuada que permita la identificación del agente infeccioso, es crucial seguir los siguientes pasos:

1. Seleccionar el lugar anatómico adecuado: Elegir el sitio donde el agente infeccioso se encuentre presente y pueda ser recuperado, cultivado u observado.
2. Evitar la contaminación con microbiota indígena: Por ejemplo, realizar una adecuada esterilización de la piel antes de tomar hemocultivos.
3. Evitar el contacto con antimicrobianos: Las muestras deben tomarse **antes** de la administración de antibióticos, antisépticos o desinfectantes. En caso de heridas infectadas, limpiar con agua o solución salina antes de la toma.
4. Recoger suficiente cantidad de muestra: Por ejemplo, obtener varias tomas de 10 ml en hemocultivos de adultos.
5. Utilizar contenedores estériles apropiados: Emplear tubos de boca ancha y cierre hermético para la recolección de orina, por ejemplo.
6. Usar sistemas con medios de transporte cuando sea necesario.
7. Identificar correctamente la muestra: Incluir datos del paciente y localización de la toma en el contenedor.
8. Cumplimentar el formulario de petición: Indicar fecha y hora de la toma, detalles del proceso clínico y antibióticos que recibe el paciente.
9. Transportar rápidamente al laboratorio: Especialmente en muestras urgentes o sensibles a la degradación.
10. Conservar a temperatura adecuada: Mantener las condiciones óptimas para el tipo de microorganismo y muestra durante el transporte y conservación.

Toma de Muestras

Material

• Botellas de plástico estériles: Para orina, heces y esputo. En niños, se pueden usar bolsas pediátricas para la orina.
• Jeringas estériles: Para la recolección de productos patológicos como pus.
• Tubos estériles: Para productos obtenidos por punción.
• Escobillón: Mango con una torunda de algodón en el extremo.
• Portaobjetos de vidrio: Para la extensión in situ de la muestra.
• Otros materiales: Pipetas Pasteur para muestras abundantes.

Técnica

A. Orina

Se recomienda la primera orina de la mañana. Alternativamente, se puede tomar tras 2-3 horas desde la última micción. Depositar la orina en un frasco de plástico estéril siguiendo estas precauciones:

• Lavado cuidadoso de genitales externos.
• Micción con el glande descubierto (hombres) y labios mayores y menores separados (mujeres).
• Desechar el primer tramo de la micción (40-50 ml son suficientes).
• Procesar la muestra inmediatamente después de la toma.

B. Lesiones Genitales

• Uretritis masculina: Tomar dos muestras, una uretral y otra de orina mediante micción fraccionada.
• Vulvovaginitis y cervicitis: Realizar varias tomas vaginales.
• Lesiones ulceradas: Descamar la superficie de la lesión con la punta de una pipeta Pasteur estéril e irrigar con suero fisiológico estéril.

C. Heces

Se puede realizar de dos formas:

• Defecación voluntaria: Recoger en un recipiente limpio y tomar una pequeña cantidad con una espátula estéril para depositarla en un bote estéril.
• Escobillón: Introducir el escobillón en el recto a través del ano y rotar ligeramente. También se utiliza para heces líquidas.

D. Sangre

Existen varias formas:

• Procedimiento clásico: Utilizando jeringa y aguja estériles.
• Sistema de hemocultivo: Tubos o frascos con medio de cultivo incorporado.
• Procedimiento mixto: Extraer la muestra con el procedimiento clásico e introducirla en un sistema de hemocultivo.

E. Secreciones Rinofaríngeas

• Tomar la muestra con un escobillón en la zona de la lesión (amígdalas, por ejemplo).
• En fosas nasales, introducir el escobillón rotándolo ligeramente.

F. Esputos

Recoger en un tubo estéril de plástico tras la expectoración profunda, preferiblemente matinal y en ayunas, después de enjuagar la boca con agua.

Recogida y Transporte

Las muestras deben analizarse inmediatamente. Si no es posible, conservarlas en condiciones que minimicen la alteración de los microorganismos. Las normas básicas para el transporte son:

• Procesar la muestra lo antes posible.
• Evitar cambios bruscos de temperatura.
• Utilizar material resistente y embalar para evitar golpes en trayectos largos.
• Etiquetar correctamente la muestra, especialmente las de alto riesgo infeccioso.

Métodos Anaerobios

El objetivo es evitar el contacto con el oxígeno, la desecación y la multiplicación de los microorganismos. Existen diversos métodos:

• Jeringa montada.
• Tubos con atmósfera anaerobia.
• Hisopos para anaerobios.
• Bolsas anaerobias.

Identificación

El objetivo es identificar el agente causal para instaurar una terapia adecuada. Se utilizan diferentes métodos:

• Identificación morfológico-tintorial: Examen directo y cultivo del microorganismo.
• Identificación y tipificación bioquímica: Para bacterias y levaduras.
• Identificación inmunológica: Detección de antígenos o anticuerpos específicos.

Comunicación de Resultados

Se emiten dos tipos de informes:

1. Informe preliminar: Con los primeros resultados, para instaurar un tratamiento urgente.
2. Informe final: Tras finalizar todas las pruebas, debe ser completo y claro, breve y orientativo.